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5min極速病毒RNA提取試劑盒

簡要描述:

5min極速病毒RNA提取試劑盒公司正在出售的產(chǎn)品:草魚腎臟細胞 Nogo-66 (1-40)多肽 雞貧血病毒PCR檢測試劑盒 大鼠乳腺癌標(biāo)志物-CA153ELISA Kit 木質(zhì)含量活性比色法檢測試劑盒 阿薩芽胞桿菌 多巴胺受體相互作用蛋白1抗體

更新時間:2024-01-12

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5min極速病毒RNA提取試劑盒

商品屬性:

產(chǎn)品名稱

規(guī)格

貨號

5min極速病毒RNA提取試劑盒

50T

A-PJ1071

本試劑盒采用裂解液,可快速可靠的從病毒液樣本中純化出高純度的總 RNA。該試劑盒是目前國際上操作步驟最少、用時最短的病毒 RNA 提取試劑盒(僅需要 5 分鐘)。應(yīng)用本試劑盒提取的 RNA 可直接用于反轉(zhuǎn)錄、基因克隆、定量 PCR 檢測等多種分子生物學(xué)實驗。
QQ截圖20240110094643.jpg注意事項:
(1) 本試劑盒中的 Washing Buffer 中已經(jīng)加乙醇,無需單獨添加。
(2) RNA LB1 和 RNA BB2 均具有腐蝕性,注意防護。
操作方法
(1)裂解/上柱(1.5ml EP 管中處理)
液體樣本:血清、血漿、唾液、痰液、尿液、細胞培養(yǎng)病毒上清液等液體樣本直接吸取 150 μl 到 1.5ml EP 管中,并加入 120 μl RNALB1,漩渦混合均勻 10 秒。打開 1.5ml EP 管蓋,并加入 500 μl RNABB2 中,漩渦混合均勻 10 秒。倒入吸附柱中,13000 rpm 離心 30秒,倒掉過柱后的廢液,進行后續(xù)洗滌/洗脫步驟。
抗凝全血:直接吸取 150 μl 到 1.5 ml EP 管中,并加入 120 μl RNA
LB1,漩渦混合均勻 10 秒。打開 1.5 ml EP 管蓋,并加入 500 μl RNA
BB2 中,漩渦混合均勻 10 秒。13000 rpm 離心 30 秒后,將上清液倒入吸附柱中,13000 rpm 離心 30 秒,倒掉過柱后的廢液,進行后續(xù)洗滌/洗脫步驟。
固體樣本:組織、糞便等樣本。取 10~100 mg 固體材料樣本,加入到 300 μl RNA LB1 中(1.5ml EP 管),并加入幾粒鋼珠(一般3~4 粒),置于組織研磨儀中,研磨 1 分鐘。研磨完畢后,打開管
蓋,向勻漿液中加入 750 μl RNA BB2,并 13000 rpm 離心 1 分鐘。
打開管蓋,用 1 ml 吸頭吸取 750 μl 上清液到吸附柱中。13000 rpm離心 30 秒,倒掉過柱廢液,進行后續(xù)洗滌/洗脫步驟。
(2) 洗滌和洗脫
上述裂解/上柱操作完畢后,向吸附柱中加入 500 μl WashingBuffer,13000 rpm 離心 15 秒,并倒掉過柱廢液。重復(fù)此洗滌步驟一次。 將吸附柱重新放回離心機,13000 rpm 空離心 1min,將殘留的乙醇甩干。 將吸附柱芯放入到 1.5 mL Nuclease Free收集管中,向吸附柱芯中加入 20~50 μl Nuclease Free H2O,室溫放置1 min,13,000rpm離心 1min,洗脫液即為提取的病毒RNA,冷凍保存。
特別說明:
(1)RNA LB1 和 RNA BB2 含有高鹽,在樣本加入到此溶液后,病毒會迅速滅活。同時此溶液對皮膚有腐蝕性,務(wù)必做好防護,如接觸到皮膚,用大量清水沖洗。
(2)樣本處理過程中的吸頭等材料可能含病毒分子,實驗完畢后務(wù)必妥善處理,不能隨意丟棄。


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PCR基本步驟及注意事項?

一、實驗原理

PCR是體外人工選擇性擴增DNA的一種方法,它類似于生物體內(nèi)DNA的復(fù)制。在生物體內(nèi)DNA復(fù)制需要模板、引物、DNA聚合酶、DNA解旋酶、 dNTPs;而體外PCR反應(yīng)同樣需要類似的成分,有模板、引物、PCR Buffer、Taq酶、dNTPs。其中引物是人工設(shè)計的特定序列,實現(xiàn)對特定位置的擴增;PCR Buffer提供一個反應(yīng)的緩沖環(huán)境;反應(yīng)過程同生物體內(nèi)一樣,DNA雙鏈打開,引物結(jié)合模板,延伸形成新鏈。而這些過程在生物體內(nèi)靠DNA解旋酶解鏈,而在體外在通過控制反應(yīng)溫度實現(xiàn)的。如常用94℃變性模板DNA打開雙鏈,在退火溫度處引物結(jié)合到模板上,最后在72℃完成延伸,并反復(fù)重復(fù)此過程即可實現(xiàn)對特定片段DNA的大量擴增。到第三循環(huán)開始才產(chǎn)生出和靶DNA區(qū)段相同的DNA分子,進一步循環(huán)地產(chǎn)生出靶DNA區(qū)段的指數(shù)加倍。

在擴增后期,由于產(chǎn)物積累,使原來呈指數(shù)擴增的反應(yīng)變成平坦的曲線,產(chǎn)物不再隨循環(huán)數(shù)而明顯上升,這稱為平臺效應(yīng)。平臺期(Plateau)會使原先由于錯配而產(chǎn)生的低濃度非特異性產(chǎn)物繼續(xù)大量擴增,達到較高水平。因此,應(yīng)適當(dāng)調(diào)節(jié)循環(huán)次數(shù),在平臺期前結(jié)束反應(yīng), 減少非特異性產(chǎn)物。到達平臺期(Plateau)所需循環(huán)次數(shù)取決于樣品中模板的拷貝。

二、主要的成分

1.模板可以是多種形式,主要包括基因組DNA、質(zhì)粒DNA、攜帶病毒的基因組DNA、PCR產(chǎn)物,cDNA等,但不能為RNA。對于不同類型的模板,其主要不同在于預(yù)變性的時間以及模板的量。一般對于大的基因組DNA預(yù)變性時間10min足夠,質(zhì)粒DNA2min、攜帶病毒的基因組DNA預(yù)變性2min、PCR產(chǎn)物預(yù)變性2min即可。

注意cDNA為單鏈DNA,但仍可做PCR的模板,只不過在第一輪循環(huán)時只有一個引物結(jié)合,合成另一條鏈。從第二輪開始,兩個引物均與特異位點結(jié)合,從而實現(xiàn)了與常規(guī)PCR的接軌。而同作為單鏈的RNA卻不能進行PCR擴增,原因就在于實現(xiàn)PCR反應(yīng)的是DNA聚合酶,只能特意識別DNA鏈。

2.對于模版的量來說,一般25ul體系DNA的質(zhì)量為50—100ng。對于基因組DNA由于其結(jié)構(gòu)比較復(fù)雜,提取的濃度也往往比較大,為防止?jié)舛冗^大對PCR造成影響,故需對提取的DNA進行梯度稀釋。否則濃度過高則可能會引起非特異性擴增。對于質(zhì)粒及PCR產(chǎn)物由于其結(jié)構(gòu)簡單,且提取濃度一般較低,則無需稀釋。

PCR實驗中應(yīng)該注意的問題有哪些?

沒有ct值

檢測結(jié)果遇到?jīng)]有Ct值情況,排查是否有以下問題:

1、循環(huán)數(shù)不夠(一般不超過45循環(huán),不僅背景值提高,定量也不準);

2、PCR程序設(shè)置錯誤,檢測熒光信號的步驟有誤。一般SG法采用72℃延伸時采集,TaqMan法則一般在退火結(jié)束時或延伸時采集信號,另外熒光采集是否選中;

3、引物或探針降解??赏ㄟ^PAGE電泳檢測引物和探針是否降解;

4、模板量可能降解或上樣量不足(不超過500ng,根據(jù)試劑盒說明書即可), 對未知濃度的樣本應(yīng)從系列稀釋樣本的最高濃度做起;如果發(fā)生模板降解,應(yīng)考慮樣本準備中雜質(zhì)的引入及反復(fù)凍融的情況,建議將模板樣本小量分裝儲備,避免反復(fù)凍融;

5、引物探針是否合適(尤其是引物跨越內(nèi)含子,以確保擴增基因組DNA;上下游引物Tm值超過4℃以上也會影響擴增)。

ct值過晚

在相對定量中, Ct值一般控制在15—25之間比較好,如果在絕對定量中, 對低拷貝數(shù)的樣品,Ct值會增大, 但是一般不宜超過40循環(huán), 否則定量不準確。

因此,判斷Ct值出現(xiàn)過晚是否屬于非正常情況, 需要根據(jù)具體實驗設(shè)計和目的進行。

1、擴增效率低。引物之間或者引物和探針的比例不合適, 需要進行優(yōu)化;引物或探針設(shè)計不合理, 需要重新設(shè)計;

2、PCR程序不合適, 改用三步法進行反應(yīng), 或者優(yōu)化退火/延伸溫度, 可以適當(dāng)降低退火溫度; 退火/延伸時間短(可以在推薦的時間條件下延長10s);

3、MgCl2濃度不合適,增加鎂離子濃度等。PCR各種反應(yīng)成分的降解或加樣量的不足;

4、PCR產(chǎn)物太長。PCR產(chǎn)物設(shè)計超過500bp;

5、模板中存在抑制物。用高純度模板進行PCR檢測或?qū)⒛0暹M行稀釋。

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